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10.5935/abc.20140083

Original Articles

Obesity does not Lead to Imbalance Between Myocardial Phospholamban Phosphorylation and Dephosphorylation

Freire

Paula Paccielli

1 Alves

Carlos Augusto Barnabe

1 Deus

Adriana Fernandes de

1 Leopoldo

Ana Paula Lima

2 Leopoldo

André Soares

2 Silva

Danielle Cristina Tomaz da

1 Tomasi

Loreta Casquel de

1 Campos

Dijon Henrique Salomé

1 Cicogna

Antonio Carlos

1 Universidade Estadual Paulista Faculdade de Medicina de Botucatu Departamento de Clínica Médica

Botucatu

Brazil Departamento de Clínica Médica - Faculdade de Medicina de Botucatu - Universidade Estadual Paulista, Botucatu, SP - Brazil 2 Universidade Federal do Espírito Santo Centro de Educação Física e Desportos

Vitória

Brazil Centro de Educação Física e Desportos - Universidade Federal do Espírito Santo, Vitória, ES - Brazil

Mailing Address: Paula Paccielli Freire, Rua Joaquim Francisco de Barros, Bairro Alto. Postal Code 18600-380, Botucatu, SP - Brazil E-mail: freirepp@hotmail.com; freirepp2@gmail.com

Potential Conflict of Interest

No potential conflict of interest relevant to this article was reported.

27 06 2014

07 2014

103 1 41 50 26 11 2013 27 01 2014 18 02 2014

This is an Open Access article distributed under the terms of the Creative Commons Attribution Non-Commercial License which permits unrestricted non-commercial use, distribution, and reproduction in any medium, provided the original work is properly cited.

Background:

The activation of the beta-adrenergic system promotes G protein stimulation that, via cyclic adenosine monophosphate (cAMP), alters the structure of protein kinase A (PKA) and leads to phospholamban (PLB) phosphorylation. This protein participates in the system that controls intracellular calcium in muscle cells, and it is the primary regulator of sarcoplasmic reticulum calcium pump activity. In obesity, the beta-adrenergic system is activated by the influence of increased leptin, therefore, resulting in higher myocardial phospholamban phosphorylation via cAMP-PKA.

Objective:

To investigate the involvement of proteins which regulate the degree of PLB phosphorylation due to beta-adrenergic activation in obesity. In the present study, we hypothesized that there is an imbalance between phospholamban phosphorylation and dephosphorylation, with prevalence of protein phosphorylation.

Methods:

Male Wistar rats were randomly distributed into two groups: control (n = 14), fed with normocaloric diet; and obese (n = 13), fed with a cycle of four unsaturated high-fat diets. Obesity was determined by the adiposity index, and protein expressions of phosphatase 1 (PP-1), PKA, PLB, phosphorylated phospholamban at serine16 (PPLB-Ser16) were assessed by Western blot.

Results:

Obesity caused glucose intolerance, hyperinsulinemia, hypertriglyceridemia, hyperleptinemia and did not alter the protein expression of PKA, PP-1, PLB, PPLB-Ser16.

Conclusion:

Obesity does not promote an imbalance between myocardial PLB phosphorylation and dephosphorylation via beta-adrenergic system.

Obesity Phosphorylation Rats Leptin Adyposity

Introduction

The beta-adrenergic system (BAS) modulates cardiac performance via beta receptor, G protein, adenylyl cyclase, and cyclic adenosine monophosphate (cAMP). The cAMP alters protein kinase A (PKA), thus releasing the catalytic subunit and activating the phosphorylation of myocardial proteins1 ^, 2, which are involved in calcium (Ca²⁺) transport - Figure 1.

Figure 1 The activation of the beta-adrenergic system, by means of the beta receptor, leads to the stimulation of the G protein, via alpha subunit, thus activating AC and promoting the transformation of ATP into cAMP. The latter alters the conformation of PKA, releasing and stimulating the PKA catalytic subunit, which triggers the phosphorylation of different proteins involved in calcium transport. AC: adenyl cyclase; cAMP: 3’. 5’ cyclic adenosine monophosphate; ATP: adenosine triphosphate; PKA: protein kinase A.

Phospholamban (PLB) participates in the control of intracellular calcium in the myocardium; it is the protein that regulates the activity of Ca²⁺ pump of the sarcoplasmic reticulum (SERCA2a)1 ^, 3 ^- 5; the dephosphorylated PLB forms the complex PLB-SERCA2a, which inhibits the pump and does not allow the transfer of the cytosolic Ca²⁺ to the sarcoplasmic reticulum; phosphorylation uncouples the complex PLB-SERCA2a, therefore increasing the calcium recapture by SERCA2a3.

The connection PLB-SERCA2a is controlled by cycles of phosphorylation and dephosphorylation, by the action of PKA and phosphatase 1 (PP-1), respectively. The prevalence of PLB phosphorylation, site of serine 16, occurs with the activation of PKA. Simultaneously, phosphorylates the inhibitory protein (I-1), thus forming the complex I-1/PP-1 and preventing PLB dephosphorylation caused by PP-1. Dephosphorylation is prevalent when PKA is deactivated, therefore there is no PLB and I-1 phosphorylation; when phosphate is not added to I-1, the formation of I-1/PP-1 is not possible, which allows PP-1 to dephosphorylate PLB, in its active state6 ^- 8 (Figure 2).

Figure 2 A. The prevalence of phosphorylation occurs when PKA is activated while it phosphorylates I-1, thus preventing PLB dephosphorylation. B. The prevalence of dephosphorylation occurs when PKA is not activated. There is no PLB and I-1 phoshporylation, therefore PP-1 maintains its active state. cAMP: 3’5’ cyclic adenosine monophosphate; I-1: inhibitory protein 1; P: phosphate; PKA: protein kinase A; pPLB: phosphorylated phospholamban; PLB: dephosphorylated phospholamban; PP-1: phosphatase-1; Serca2a: Ca<sup>2+</sup> pump.

Obesity - excessive fat tissue in relation to lean mass9 - produces adipokines, which interfere in biological processes, including the activation of BAS by leptin4 ^, 10. The BAS stimulation phosphorylates the myocardial PLB via cAMP-PKA. There are no studies analyzing the balance between PLB phosphorylation and dephosphorylation via BAS in obesity. Relling et al11 used obese rats for 12 weeks and showed increased PLB expression and decreased phosphorylated PLB (pPLB). Lima-Leopoldo12 verified decreased pPLB via cAMP in serine 16 in obese rats for 15 weeks. These authors did not evaluate kinase and phosphatase proteins in the animals.

The inexistence of papers analyzing PLB activation and deactivation in obesity induced the investigation concerning the involvement of proteins that regulate PLB phosphorylation via BAS. The hypothesis of this study is that obesity promotes the imbalance between phospholamban phosphorylation and dephosphorylation, with prevalent phosphorylation.

Methods Animals and experimental protocol

Twenty-seven male 30-day old Wistar rats were used, coming from the bioterium of the Medical Clinic Department at the Medical School of Botucatu (SP) - Unesp, under the following conditions: individual polypropylene cages with chrome wire tops covered with sterilized pine wood shaving; room temperature of 24ºC and 12-hour light cycles. All of the procedures were conducted according to the Guide for the Care and Use of Laboratory Animals13, being afterwards approved by the Committee on Animal Research and Ethics of the Medical School of Botucatu (Unesp, Botucatu), protocol number 765.

Animals were randomized into two groups: control (C) and obese (Ob). Animals in C (n = 15) were fed with a normocaloric diet, RC Focus 1765, Agroceres ^®, Rio Claro, São Paulo, Brazil (22% protein, 42.7% carbohydrate, 4% fat, 9% minerals, 8% fibers, 12% humidity, 1.5% calcium, 0.8% phosphorus); animals in group Ob received a cycle of four hyperlipidic diets Agroceres^®, Rio Claro, São Paulo, Brazil (20% protein, 26;4% carbohydrate, 20% fat, 10% minerals, 9% fibers, 12.5% humidity, 1.4% calcium, 0.7 phosphorus), which were rotating for a 15-week period. The profile analysis of fatty acids in the diet showed that unsaturated ones correspond to 80%, and saturated ones, to 20%. The food intake of animals was measured daily, and the intake of water, ad libitum. Animals were weighed weekly, with the digital scale Mettler^®, model Spider 2. After 15 weeks of treatment, all of the animals were anesthetized with pentobarbital sodium (50 mg /kg/ip; Cristália^® Produtos Químicos Farmacêuticos Ltda., Itapira, São Paulo, Brazil) and euthanized by decapitation.

Constitution of control and obese groups

In the biological testing, especially in experimental trials, even at similar laboratory conditions, the response homogeneity is not certain. In this sense, rats submitted to standard and hyperlipidic diets may present characteristics in common, in higher or lower scales, such as adiposity index. A study published previously14 showed that this fact may lead to classification errors, that is, animals submitted to standard diets could be classified as control, when in fact they exhibit aspects of obese animals, and vice-versa. Therefore, it is necessary to establish criteria to separate the animals in two distinct groups, according to the adiposity index. With that purpose, a 95% confidence interval (CI) was established for the average adiposity level in control and obese rats. The adopted separation point (SP) stood between the mean and the upper limit point in group C and the lower limit point of group Ob; considering that point, animals with adiposity index higher than the SP were excluded from group C, and those with adiposity index lower than the SP were excluded from group Ob.

Nutritional profile of the animals

In order to assess if obesity had altered the nutritional profile, food consumption was analyzed, as well as caloric intake, dietary efficiency, body mass, body fat and adiposity index. Food intake was daily calculated from individual leftovers. Caloric intake was calculated by the following formula: weekly food consumption multiplied by the energetic value of each diet (g x kcal). With the objective of analyzing the capacity of converting the consumed food energy into body weight, dietary efficiency was calculated by dividing the total body weight gain of the animals (g) by the total energy intake (kcal).

Characterization of obesity

The characterization of obesity, at the end of the 15-week period, was established by the adiposity index. The deposits of epididymal, retroperitoneal and visceral fat in the animals were dissected in order to quantify body fat. The adiposity index was measured by the sum of fat deposits normalized by final body weight multiplied by 100. This method allows a consistent analysis of body fat deposits15.

Comorbidities associated with obesity

Since obesity can lead to cardiovascular, metabolic and hormonal comorbidities, such as systemic arterial hypertension, glucose intolerance, systemic resistance to insulin, dyslipidemia, hyperglycemia, hyperinsulinemia, and hyperleptinemia16 ^, 17, the following variables were analyzed:

a) Systemic blood pressure

Blood pressure was assessed by measuring the systolic arterial pressure (SAP). SAP was measured by plethysmography, using the electronic sphygmomanometer, Narco Bio-System^®, model 709-0610 (International Biomedical, Austin, TX, United States). The rats were previously warmed, at a temperature of 40ºC for five minutes, in a wooden box (50 × 40 cm), covered with sterilized wood shaving, with the objective of producing the vasodilatation of the caudal artery. Afterwards, the cuff was connected to a pulse transducer placed around the animal's tail and insufflated to 200 mmHg; then, it was uninsufflated. The arterial pulses were recorded with a Gould RS 3200 polygraph (Gould Instrumenta Valley View, Ohio, United States).

b) Glucose tolerance test

Animals were submitted to a six-hour fasting period. Blood collection in the caudal artery was conducted in basal condition and after the intraperitoneal administration of 25% glucose (Sigma^®-Aldrich, Saint Louis, MO, United States), equivalent to 2.0 g/kg. Blood samples were collected in moments 0 (basal condition), at 15, 30, 60, 90 and 120 minutes. The ACCU-CHEK GO glucose monitor kit (Roche Diagnostic Brazil Ltda., São Paulo, Brazil) was used to measure the glycemic index.

c) Hormonal profile: insulin and serum leptin

The serum concentrations of these hormones were determined by the ELISA method, by using specific kits (Linco Research Inc, St. Louis, MO, United States). A microplate reader was used for the analysis (Spectra MAX 190, Molecular Devics, Sunnyvale, CA, United States).

d) Glycemic and lipid profile

The lipid and glycemic profiles were assessed by analyzing serum glucose, triacylglycerol, total cholesterol, high and low density lipoprotein and non-esterified fatty acids (NEFA). Animals fasted for 12 to 15 hours, and they were anesthetized with pentobarbital sodium (50 mg/kg/IP, Cristália^® Produtos Químicos Farmacêuticos Ltda., Itapira, São Paulo, Brazil) and euthanized. Afterwards, blood samples were collected in heparinized Falcon tubes, which were centrifuged (3,000 rpm; 10 minutes; Eppendorf^® Centrifuge 5804-R, Hamburg, Germany) and stored at −80ºC. Concentrations of serum glucose, triacylglycerol, total cholesterol, and high and low density lipoprotein were determined with specific kits (CELM, Barueri, São Paulo, Brazil) and analyzed by the automated colorimetric enzymatic method (Technicon, RA-XTTM System, Global Medical Instrumentation, Minnesota, United States). NEFA levels were determined with the method by Johnson & Peters18, using a colorimetric kit (WAKO NEFA-C, Wako Pure Chemical Industries, Osaka, Japan).

Characterization of cardiac remodeling

Since obesity can lead to cardiac remodeling, it was studied by the structural post mortem evaluation and by analyzing the expression of kinase and phosphatase proteins, which regulate the level of PLB phosphorylation resulting from the beta-adrenergic activation of the myocardium.

a) Cardiac structural analysis

Animals were submitted to fasting from 12 to 15 hours, being afterwards anesthetized with pentobarbital sodium (50 mg/kg/ip; Cristália^® Produtos Químicos Farmacêuticos Ltda., Itapira, São Paulo, Brazil) and euthanized by decapitation. The heart of the animals was removed and dissected, and the following determinations were made: total weight of the heart, of the left and right ventricles, and the atrium, and their respective relations with body weight and tibial length at the time of euthanasia. These analyses may indicate the presence of cardiac remodeling at atrial and ventricular levels.

b) Protein expression analysis

The protein expression of total PLB, pPLB (ser-16), PKA and PP-1 was conducted by the Western Blot technique.

The Western Blot technique a) Protein extraction

Fragments of the left ventricle were rapidly frozen in liquid nitrogen and stored in a freezer at −80°C. The frozen sample was homogenized in a Polytron device (Ika Ultra Turrax^TM T25 Basic, Wilmington, United States) with hypotonic lysis buffer (potassium phosphate 50 mM pH 7.0, sucrose 0.3 M, DTT 0.5 mM, EDTA 1 mM pH 8.0, PMSF 0.3 mM, NaF 10 mM and phosphatase inhibitor). The process was performed three times for 10 seconds at 4ºC, with 20-second intervals. The product of homogenization was centrifuged (Eppendorf 5804R, Hamburg, Germany) at 12.000 rpm for 20 minutes at 4ºC, and the supernatant was transferred to Eppendorf tubes and stored in a freezer at −80ºC. The protein concentration was analyzed by the Bradford method19, using the curves in the BSA Protein Standard (Bio-Rad, Hercules, CA, United States) as a pattern.

The protein samples were diluted in a Laemmli buffer (Tris-HCL 240mM, SDS, 0.8%, 40% glicerol, 0.02% bromophenol blue and 200 mM beta-mercaptoethanol) and separated by electrophoresis using the Mini-Protean 3 Electrophoresis Cell system (Bio-Rad, Hercules, CA, United States). Electrophoresis was conducted with biphasic stacking (Tris-HCL 240mM pH 6.8, 30% polyacrylamide, APS and Temed) and resolution gel (Tris-HCL 240mM pH 8.8, 30% polyacrylamide, APS and Temed), with concentrations of 6% to 12%, depending on the molecular mass of the analyzed protein. In the first gel well, one molecular mass pattern was applied, with the Kaleidoscope Prestained Standards(Bio-Rad, Hercules, CA, United States), in order to identify the size of the bands. Electrophoresis was made at 120 V (Power Pac HC 3.0A, Bio-Rad, Hercules, CA , United States), for approximately three hours, with loading buffer (Tris 0.25M, glycine 192 mM and 1% SDS). Afterwards, proteins were transferred to a nitrocellulose membrane in a Mini-Trans Blot system (Bio-Rad, Hercules, CA, United States), by using the transfer buffer (Tris 25 mM, glycine 192 mM, 20% methanol and 0.1% SDS). Membranes were washed twice with a TBS buffer (Tris-HCl 20mM pH 7.6 and NaCl 137mM). The non-specific binding sites of the primary antibody to the membrane were blocked by incubation, with a 0.5% skimmed milk powder solution dissolved in a TBS-T buffer, pH 7.4 (Tris-HCl 20mM, NaCl 137mM and 0.1% Tween 20 detergent) for 120 minutes at room temperature under constant agitation. Afterwards, the membrane was washed three times in TBS-T buffer (Tris 1M pH2.8, NaCl 5M and Tween 20) and incubated with the primary antibody diluted in the blocking solution, under constant agitation for 12 hours. After the incubation with the primary antibody, the membrane was washed three times in TBS-T buffer and incubated with the secondary antibody in a blocking solution for two hours under constant agitation. In order to remove the excessive secondary antibody, the membrane was washed three times in TBS-T buffer. Finally, immunodetection was performed by the chemiluminescence method, according to the manufacturer's instructions (Enhancer Chemi-Luminescence, Amersham Biosciences, NJ, United States). The nitrocellulose membranes were exposed to radiographic films X-Omat AR (Eastman Kodak Co., United States), in the periods standardized for each of the analyzed proteins.

b) Antibodies

PLB mouse IgG (Thermo Scientific, Golden, CO, United States, MA3-922). Used concentration: 1:5,000.

Phospho-Phospholamban (Ser16),rabbit IgG(Badrilla, Leeds, West Yorkshire, United Kingdom, A010-12). Used concentration: 1:5,000.

PKArabbit IgG(Abcam Inc, MA, United States, AB71764). Used concentration: 1:500.

PP1rabbit IgG (Abcam Inc, MA, United States, AB16446). Used concentration: 1:1,000.

β-Actin, rabbit IgG1 (Santa Cruz Biotechnology Inc, Santa Cruz, CA, United States, SC81178). Used concentration: 1:1,000.

Quantitave blot analyses were conducted with the software Scion Image (Scion Corporation, Frederick, Maryland, United States), which is a free software available at: http://www.scioncorp.com/

Statistical analysis

All of the variables were submitted to the test of normality Kolmogorov-Smirnov. The nutritional profile, the comorbidities associated with obesity, the anatomical data and the cardiac protein expression were analyzed by the Student's t-test for independent samples. The glucose tolerance test was examined by the analysis of variance (ANOVA) for the model of repeated measures in two independent groups, being complemented by the Bonferroni test20. The Sigma Plot 3.5 for Windows was used for statistical analyses (Systat Software Inc., San Jose, CA, United States). Data were presented as mean ± standard-deviation. The 5% significance level was considered for all of the variables.

Results Composition of control and obese groups

After the criterion established to compose the experimental groups was applied, 27 animals remained in the study and constituted the control (C, n = 14) and the obese group (Ob, n = 13).

Nutritional profile

Table 1 shows the nutritional profile of animals in C and Ob. Final body weight, weight gain, deposits of epididymal, retroperitoneal and visceral fat, total body fat and adiposity index were higher in the obese group in relation to the control group. Animals in the Ob consumed less food than those in the C group. There was no difference between both groups with regard to caloric intake.

Table 1 Nutritional profile

Variables	Groups
Variables	C (n = 14)	Ob (n = 13)
I BW (g)	290 ± 13	308 ± 23*
FBW (g)	445 ± 39	486 ± 45*
Weight gain (g)	300 ± 16	342 ± 16*
Food intake (g/day)	26.0 ± 2.1	22.0 ± 2.4*
Caloric intake (kcal/day)	76.7 ± 6.2	80.3 ± 8.7
Dietary efficiency (%)	2.05 ± 0.30	2.33 ± 0.25*
Epididymal (g)	8.4 ± 1.7	14.2 ± 4.4*
Retroperitoneal (g)	7.3 ± 1.9	14.4 ± 4.7*
Visceral (g)	4.80 ± 1.20	8.10 ± 1.80*
Total body fat (g)	20.5 ± 4.1	36.7 ± 7.1*
Adiposity index (%)	4.61 ± 0.85	7.55 ± 1.36*

C: control; Ob: obese; FBW: final body weight; IBW: initial body weight. Data expressed as mean ± standard deviation. Student's t-test for independent samples.

p <0.05 * C.

Analysis of comorbidities a) Hormonal profile and systolic arterial pressure

Figure 3 illustrates the result of serum insulin values (A) and leptin (B); obesity leads to increasing concentrations of these hormones. The result of the final systolic arterial pressure (C) did not present any significant differences between groups.

Figure 3 Serum insulin (A) and leptin levels (B) in control (n = 8) and obese animals (n = 8). Systolic arterial pressure (C) of control (n = 14) and obese animals (n = 13). Data expressed as mean ± standard-deviation. Student’s t-test for independente samples, *p <0,05 × C b) Glucose tolerance test

Figure 4 shows the results of the glucose tolerance test performed in groups C and Ob. Glycemic levels were similar at the baseline between groups. After the intraperitoneal administration of glucose, glycemia was high in the Ob group and in moments 15, 30, 60 and 90 in comparison to group C.

Figure 4 Glucose tolerance test in control (n = 14) and obese animals (n = 13). Data expressed as mean standard-deviation. Analysis of variance (ANOVA) for the model of repeated measures in independent groups, complemented by the Bonferroni test. * p < 0.05 × C. c) Glycemic and lipid profile

Table 2 shows the serum biochemical analyses of animals in groups C and Ob. The plasma concentrations of glucose, cholesterol, HDL and NEFA were not different between treatments; the triglyceride concentration was significantly higher in Ob than in C.

Table 2 Glycemic and lipid profile

Variables	Groups
Variables	C (n = 14)	Ob (n = 13)
Glucose (mg/dL)	125 ± 16	138 ± 14
Triglycerides (mg/dL)	43.3 ± 10.3	82,1 ± 15,7*
Cholesterol (mg/dL)	62.4 ± 11.5	67.5 ± 18.0
HDL (mg/dL)	23.5 ± 3.0	26.6 ± 5.8
NEFA (mmol/L)	0.42 ± 0.10	0.43 ± 0.10

HDL: high-density lipoprotein; NEFA: non-esterified fatty acids. Data expressed as mean ± standard deviation. Student's t-test for independent samples.

p <0.05 * C

Cardiac remodeling a) Macroscopic structure of the heart

Table 3 shows the post mortem macroscopic structure of the heart of rats in C and Ob. After 15 weeks of obesity, there was a significant difference concerning the weight of the atria.

Table 3 Macroscopic structure of the heart and tibia

Variables	Groups
Variables	C (n = 14)	Ob (n = 13)
Tibia (cm)	4.30 ± 0.07	4.30 ± 0.10
LV (g)	0.79 ± 0.06	0.85 ± 0.09
RV (g)	0.23 ± 0.02	0.25 ± 0.03
at (g)	0.09 ± 0.01	0.10 ± 0.01*
Heart total (g)	1.11 ± 0.09	1.20 ± 0.14
LF/tibia (g/cm)	0.18 ± 0.01	0.19 ± 0.02
RV/tibia (g/cm)	0.050 ± 0.005	0.060 ± 0.008
AT/tibia (g/cm)	0.020 ± 0.002	0.020 ± 0.003
Heart/tibia (g/cm)	0.30 ± 0.02	0.30 ± 0.02

C: control; Ob: obese; AT: atrial mass; RV: right ventricle mass; LV: left ventricle mass; AT/tibia: AT to tibia length ratio; RV/tibia: RV to tibia length ratio; LV/tibia: LV to tibia length ratio; Data expressed in mean ± standard-deviation. Student's t-test for independent samples.

p< 0.05 vs C

b) Protein expression analysis

According to Figure 5, we did not observe significant differences in protein expressions of PLB (A), pPLB Ser-16 (B), PKA (C) and PP-1 (D) between the control and obese groups.

Figure 5 Expressions of PLB (A), pPLB-ser16 (B), PKA (C) and PP-1 (D) normalyzed by beta-actin. PKA: protein kinase A; PLB: dephosphorylated phospholamban; pPLB-ser16: phosphorylated phospholamban in serin-16; PP-1: phosphatase-1. Control (n = 6) and obese (n = 6). Data are expressed as mean ± standard-deviation. Student’s t-test * p <0.05 × C. Discussion

The main finding in this study was that obesity induced by an unsaturated high-fat diet did not lead to changes in the balance between phosphorylation and dephosphorylation in the heart; the behaviors of kinase and phosphatase proteins were similar in both analyzed groups.

The diet-induced obesity is similar to that found in the human population, and it has been used to reproduce possible molecular, structural, metabolic, and functional changes in different organs of the human body21. The high calorie content of the diet used in this experiment, which was enough to promote obesity among rats, was a result of the high content of unsaturated fats. In this study, results showed that the adiposity index was significantly higher among obese rats (control = 4.61 ± 0.85; obese = 7.55 ± 1.36; p < 0.005) in relation to the ones in the control group. This result is in accordance with studies (conducted with rodents) that classify obesity using this index22.

Obesity has been characterized by several comorbidities, such as glucose intolerance, insulin resistance, systemic arterial hypertension, dyslipidemia, hyperinsulinemia and hyperleptinemia11 ^, 23 ^, 24. In this study, obese animals presented the following comorbidities: glucose intolerance, hyperinsulinemia, hypertriglyceridemia, and hyperleptinemia. Glucose intolerance associated with increasing serum insulin showed that animals were resistant to the action of insulin. The increasing levels of insulin in obese rats were not able to maintain the homeostasis of carbohydrates facing the supplementation of this substrate in obese animals. The increasing levels of triglycerides in obese rats can be a consequence of the high capture of triglycerides in the form of chylomicrons and/or the decreasing absorption of triglycerides by peripheral tissues25. The increased leptin levels were caused by larger fat deposits, since there is correlation between the levels of leptin and the fat tissue14 ^, 26. Since leptin is a hormone that derives from the fat tissue, it participates in energy balance, thus regulating the food intake and the oxidation of lipids27 ^, 28. The reduced food intake by obese rats suggests that the increasing levels of leptin were effective for appetite control. Data concerning comorbidities observed in this study are in accordance with other studies that induced obesity experimentally14 ^, 17 ^, 29 ^, 30.

The most important observation in this study was that diets induced by unsaturated fat did not change the pPLB-ser16 expression, and proteins in charge of balancing phosphorylation and dephosphorylation, PKA and PP-1, respectively. Since the beta-adrenergic via is in charge of phosphorylation in the site of serum-16 of the PLB, we can infer that this system was not sufficiently stimulated to lead to changes in the myocardial PLB phosphorylation or that another system was opposed to such an activation. The behavior of pPLB-ser16 in this study is not in accordance with a previous study conducted in our laboratory12, in which decreased PLB was found in its phosphorylated state in serum 16 among obese rats treated with the same diet used in this study. We could not find an explanation for these different results; such a divergence could be related to the adiposity index in obese animals, which was 16% higher in the study conducted by Lima-Leopoldo12. No studies in literature analyzed the relationship between proteins that interfere in myocardial PLB phosphorylation and dephosphorylation in obese rats submitted to a hyperlipidic diet.

Conclusion

The initial hypothesis of this study was not confirmed. Obesity does not promote imbalance between myocardial PLB phosphorylation and dephosphorylation by the beta-adrenergic via.

Author contributions

Conception and design of the research: Freire PP, Lima-Leopoldo AP, Leopoldo AS, Silva DCT, Campos DHS, Cicogna AC; Acquisition of data: Freire PP, Alves CAB, Deus AF, Campos DHS; Analysis and interpretation of the data: Freire PP, Alves CAB, Deus AF, Lima-Leopoldo AP, Leopoldo AS, Silva DCT, Tomasi LC, Campos DHS, Cicogna AC; Statistical analysis: Freire PP, Alves CAB, Lima-Leopoldo AP, Leopoldo AS, Silva DCT, Tomasi LC, Campos DHS, Cicogna AC; Obtaining financing: Freire PP, Lima-Leopoldo AP, Leopoldo AS, Cicogna AC; Writing of the manuscript: Freire PP, Tomasi LC, Cicogna AC; Critical revision of the manuscript for intellectual content: Freire PP, Alves CAB, Deus AF, Lima-Leopoldo AP, Leopoldo AS, Silva DCT, Tomasi LC, Cicogna AC.

Sources of Funding

This study was funded by FAPESP.

Study Association

This article is part of the end-of-the-course essay of Paula Paccielli Freire from Universidade Estadual Paulista (UNESP) - Faculdade de Medicina de Botucatu (FMB).

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Obesidade não Acarreta Desequilíbrio entre Fosforilação e Desfosforilação da Fosfolambam Miocárdica

Freire

Paula Paccielli

1 Alves

Carlos Augusto Barnabe

1 Deus

Adriana Fernandes de

1 Leopoldo

Ana Paula Lima

2 Leopoldo

André Soares

2 Silva

Danielle Cristina Tomaz da

1 Tomasi

Loreta Casquel de

1 Campos

Dijon Henrique Salomé

1 Cicogna

Antonio Carlos

1 Universidade Estadual Paulista Faculdade de Medicina de Botucatu Departamento de Clínica Médica

Botucatu

Brasil Departamento de Clínica Médica - Faculdade de Medicina de Botucatu - Universidade Estadual Paulista, Botucatu, SP - Brasil 2 Universidade Federal do Espírito Santo Centro de Educação Física e Desportos

Vitória

Brasil Centro de Educação Física e Desportos - Universidade Federal do Espírito Santo, Vitória, ES - Brasil

Correspondência: Paula Paccielli Freire. Rua Joaquim Francisco de Barros, Bairro Alto. CEP 18600-380, Botucatu, SP - Brasil E-mail: freirepp@hotmail.com; freirepp2@gmail.com

Potencial conflito de interesse

Declaro não haver conflito de interesses pertinentes.

Fundamento:

A ativação do sistema beta-adrenérgico promove a estimulação da proteína G, que, via adenosina monofosfato cíclico (AMPc), altera a estrutura da proteina quinase A (PKA) e acarreta a fosforilação da fosfolambam (PLB). Essa proteína participa do sistema envolvido no controle de cálcio intracelular, em células musculares, sendo a principal reguladora da atividade da bomba de cálcio do retículo sarcoplasmático. Na obesidade ocorre ativação do sistema beta-adrenérgico por influência do aumento da leptina, acarretando, consequentemente, maior fosforilação da fosfolambam miocárdica, via AMPc-PKA.

Objetivo:

Investigar, na obesidade, o envolvimento das proteínas que regulam o grau de fosforilação do PLB decorrente da ativação beta-adrenérgica. A hipótese do estudo é que há desequilíbrio entre a fosforilação e a desfosforilação da fosfolambam, com predomínio da fosforilação da proteína.

Métodos:

Ratos Wistar machos foram randomizados e distribuídos em dois grupos: controle (n = 14), alimentado com dieta normocalórica, e obeso (n = 13), com um ciclo de quatro dietas hiperlipídicas insaturadas. A obesidade foi determinada pelo índice de adiposidade, e as expressões proteicas de fosfatase 1 (PP-1), PKA, PLB, fosfolambam fosforilado na serina 16 (pPLB-ser16) foram realizadas por Western Blot.

Resultados:

A obesidade acarretou intolerância à glicose, hiperinsulinemia, hipertrigliceridemia, hiperleptinemia e não alterou a expressão proteica de PKA, PP-1, PLB, pPLB-ser16.

Conclusão:

A obesidade não promove desequilíbrio entre a fosforilação e a desfosforilação, via beta-adrenérgica, do PLB miocárdico.

Obesidade Fosforilação Ratos Leptina Adiposidade

Introdução

O sistema beta-adrenérgico (SBA) modula o desempenho cardíaco via receptor beta, proteína G, adenilciclase e adenosina monofosfato cíclico (AMPc). A AMPc altera a proteína quinase A (PKA), liberando a subunidade catalítica, ativando a fosforilação de proteínas miocárdicas1 ^, 2 envolvidas no trânsito de cálcio (Ca²⁺) - Figura 1.

Figura 1 A ativação do sistema beta-adrenérgico, por meio do receptor beta, acarreta estimulação da proteína G que, via subunidade alfa, aciona AC, promovendo a transformação de ATP em AMPc. Esta altera a conformação da PKA liberando e estimulando a subunidade catalítica da PKA, que desencadeia fosforilação de diferentes proteínas envolvidas no trânsito de cálcio. AC: adenil ciclase; AMPc: 3′,5′ monofosfato cíclico de adenosina; ATP: adenosina trifosfato; PKA: proteína quinase A.

A fosfolambam (PLB) participa do controle do cálcio intracelular miocárdico; é a proteína reguladora da atividade da bomba de Ca²⁺ do retículo sarcoplasmático (SERCA2a)1 ^, 3 ^- 5. o PLB desfosforilado forma o complexo PLB-SERCA2a, que, inibindo a bomba, não permite transferência de Ca²⁺ citosólico para o retículo sarcoplasmático; a fosforilação desacopla o complexo PLB-SERCA2a, aumentando a recaptura do cálcio pela SERCA2a3.

A ligação PLB-SERCA2a é controlada por ciclos de fosforilação e desfosforilação, por ação da PKA e fosfatase 1 (PP-1), respectivamente. O predomínio da fosforilação do PLB, sítio da serina 16, ocorre com a ativação da PKA. Simultaneamente, a PKA fosforila a proteína inibitória 1 (I-1), formando o complexo I-1/PP-1, impedindo a desfosforilação do PLB pela PP-1. Há predomínio da desfosforilação quando a PKA é desativada, não havendo fosforilação do PLB e da I-1; a não adição do fosfato na I-1 impede a formação do I-1/PP-1, permitindo que a PP-1, em estado ativo, possa desfosforilar o PLB6 ^- 8 (Figura 2).

Figura 2 A. O predomínio da fosforilação ocorre quando a PKA é ativada, ao mesmo tempo em que fosforila a I-1, impedindo a desfosforilação do PLB. B. O predomínio da desfosforilação ocorre quando a PKA não está ativada. Não há a fosforilação do PLB e da I-1, mantendo PP-1 em seu estado ativo. AMPc: 3′,5′ monofosfato cíclico de adenosina; I-1: proteína inibitória 1; P: fosfato; PKA: proteína quinase A; pPLB: fosfolambam fosforilado; PLB: fosfolambam desfosforilado; PP-1: fosfatase-1; Serca2a: bomba de Ca<sup>2+</sup>.

A obesidade - excesso de tecido adiposo em relação à massa magra9 - produz adipocinas que interferem em processos biológicos, incluindo ativação do SBA pela leptina4 ^, 10. A estimulação do SBA fosforila o PLB miocárdico via AMPc-PKA. Não há estudos que tenham analisado o balanço entre a fosforilação e a desfosforilação do PLB via SBA na obesidade. Relling e cols.11, utilizando ratos obesos por 12 semanas, mostraram aumento da expressão do PLB e diminuição de PLB fosforilado (pPLB). Lima-Leopoldo12 verificou diminuição do pPLB via AMPc na serina 16 em ratos obesos durante 15 semanas. Esses autores não avaliaram as proteínas quinase e fosfatase nos animais.

A inexistência de trabalhos analisando a ativação e a desativação do PLB na obesidade induziu a investigação do envolvimento das proteínas reguladoras da fosforilação do PLB via SBA. A hipótese deste estudo é que a obesidade promove desbalanço entre fosforilação e desfosforilação da fosfolambam, com predomínio da fosforilação.

Métodos Animais e protocolo experimental

Foram utilizados 27 ratos Wistar machos, com 30 dias de idade, provenientes do Biotério do Departamento de Clínica Médica da Faculdade de Medicina de Botucatu (SP) - Unesp, mantidos nas seguintes condições: gaiolas individuais de polipropileno com tampas de arame cromado forradas com maravalha de pínus esterilizada; temperatura ambiente de 24°C e ciclos de iluminação de 12 horas. Todos os procedimentos foram realizados em acordo com o Guide for the Care and Use of Laboratory Animals 13 e foram aprovados pela Comissão de Ética em Experimentação Animal da Faculdade de Medicina de Botucatu (Unesp, Botucatu), protocolo número 765.

Os animais foram randomizados em dois grupos: controle (C) e obeso (Ob). Os animais C (n = 14) receberam dieta normocalórica RC Focus 1765, Agroceres^®, Rio Claro, São Paulo, Brasil (22% de proteína, 42,7% de carboidrato, 4% de gordura, 9% de minerais, 8% de fibras, 12% de umidade, 1,5% de cálcio, 0,8% de fósforo), e o grupo Ob recebeu um ciclo de quatro dietas hiperlipídicas Agroceres^®, Rio Claro, São Paulo, Brasil (20% de proteína, 26,4% de carboidrato, 20% de gordura, 10% de minerais, 9% de fibras, 12,5% de umidade, 1,4% de cálcio, 0,7 de fósforo), as quais se sucederam de forma rotativa por um período de 15 semanas. A análise do perfil dos ácidos graxos da dieta mostrou que os insaturados correspondem a 80%, e os saturados, a 20%. A ingestão alimentar dos animais foi aferida diariamente, e o consumo de água, ad libitum. Os animais foram pesados semanalmente, utilizando-se balança digital Mettler^®modelo Spider 2. Ao final das 15 semanas de tratamento, todos os animais foram anestesiados com pentobarbital sódico (50 mg/kg/ip; Cristália^® Produtos Químicos Farmacêuticos Ltda., Itapira, São Paulo, Brasil) e eutanasiados por decapitação.

Constituição dos grupos controle e obeso

Na experimentação biológica, em especial em estudos experimentais, mesmo quando mantidas as condições laboratoriais semelhantes, não está assegurada a homogeneidade de resposta. Nesse sentido, os ratos submetidos a ração-padrão e hiperlipídica podem apresentar, em maior ou menor escala, características comuns, como, por exemplo, o índice de adiposidade. Estudo publicado previamente14 mostrou que esse fato pode conduzir a um erro de classificação, ou seja, animais submetidos a ração padrão poderiam ser classificados como controle, quando na realidade exibem características de animais obesos ou vice versa. Por essa razão, tornou-se necessário estabelecer um critério que separasse os animais em dois grupos distintos de acordo com o índice de adiposidade. Com essa finalidade, foi construído um intervalo de 95% de confiança (IC) para a média do índice de adiposidade dos ratos controle e obeso. Foi adotado como ponto de separação (PS) entre os grupos o ponto médio entre o limite superior do grupo C e o limite inferior do grupo Ob; a partir desse ponto foram excluídos do grupo C os animais com índice de adiposidade acima do PS, e do grupo Ob, os animais com índice de adiposidade abaixo do PS.

Perfil nutricional dos animais

Para avaliar se a obesidade alterou o perfil nutricional, foi analisada a ingestão alimentar, o consumo calórico, a eficiência alimentar, a massa corporal, a gordura corporal e o índice de adiposidade. A ingestão alimentar foi calculada diariamente a partir da sobra individual de ração. O consumo calórico foi calculado pela seguinte fórmula: ingestão alimentar semanal multiplicada pelo valor energético de cada dieta (g × kcal). Com a finalidade de analisar a capacidade de conversão de energia alimentar consumida em peso corporal foi calculada a eficiência alimentar, dividindo-se o ganho total de peso corporal dos animais (g) pela energia total ingerida (kcal).

Caracterização da obesidade

A caracterização da obesidade, ao final do período de 15 semanas, foi realizada pelo índice de adiposidade. Os depósitos de gordura epididimal, retroperitoneal e visceral dos animais foram dissecados para a quantificação da gordura corporal. O índice de adiposidade foi mensurado pela soma dos depósitos de gordura normalizada pelo peso corporal final multiplicado por 100. Esse método permite analisar os depósitos de gordura corporal de maneira consistente15.

Comorbidades associadas à obesidade

Como a obesidade pode acarretar comorbidades cardiovasculares, metabólica e hormonal, como hipertensão arterial sistêmica, intolerância à glicose, resistência sistêmica à insulina, dislipidemias, hiperglicemia, hiperinsulinemia e hiperleptinemia16 ^, 17, as seguintes variáveis foram analisadas:

a) Pressão arterial sistêmica

A pressão arterial foi avaliada pela mensuração da pressão arterial sistólica (PAS). A PAS foi aferida por plestimografia, utilizando-se eletroesfigmomanômetro, Narco Bio-System^®, modelo 709-0610 (International Biomedical, Austin, TX, Estados Unidos). Os ratos foram previamente aquecidos à temperatura de 40ºC por cinco minutos, em uma caixa de madeira (50 × 40 cm) forrada com maravalha autoclavada, com a finalidade de produzir vasodilatação da artéria caudal. Em seguida, o manguito foi conectado a um transdutor de pulso colocado em torno da cauda do animal e insuflado até atingir 200 mmHg e, posteriormente, desinsuflado. O registro das pulsações arteriais foi coletado em polígrafo Gould RS 3200 (Gould Instrumenta Valley View, Ohio, Estados Unidos).

b) Teste de tolerância à glicose

Os animais foram submetidos a um período de jejum de seis horas. As coletas de sangue, na artéria caudal, foram realizadas na condição basal e após administração intraperitoneal de glicose 25% (Sigma^®-Aldrich, Saint Louis, MO, Estados Unidos) equivalente a 2,0 g/kg. As amostras sanguíneas foram coletadas nos momentos 0 (condição basal), 15, 30, 60, 90 e 120 minutos. O glicosímetro ACCU-CHEK GO KIT (Roche Diagnostic Brazil Ltda., São Paulo, Brasil) foi utilizado para mensuração dos níveis glicêmicos.

c) Perfil hormonal: insulina e leptina sérica

As concentrações séricas desses hormônios foram determinadas pelo método de ELISA utilizando-se kits específicos (Linco Research Inc, St. Louis, MO, Estados Unidos). A leitura foi realizada com auxílio de leitor de microplaca (Spectra MAX 190, Molecular Devics, Sunnyvale, CA, Estados Unidos).

d) Perfil glicêmico e lipídico

Os perfis lipídico e glicêmico foram avaliados por meio de análises séricas de glicose, triacilglicerol, colesterol total, lipoproteína de alta e baixa densidades e ácidos graxos não esterificados (NEFA). Os animais foram colocados em jejum por 12 a 15 horas, anestesiados com pentobarbital sódico (50 mg/kg/IP, Cristália^® Produtos Químicos Farmacêuticos Ltda., Itapira, São Paulo, Brasil) e eutanasiados. A seguir, as amostras de sangue foram coletadas em tubos Falcon com heparina, centrifugadas (3.000 rpm; 10 minutos; Eppendorf^® Centrifuge 5804-R, Hamburgo, Alemanha) e armazenadas a −80ºC. As concentrações séricas de glicose, triacilglicerol, colesterol total, lipoproteína de alta e baixa densidades foram determinadas por meio de kits específicos (CELM, Barueri, São Paulo, Brasil) e analisadas pelo método enzimático colorimétrico automatizado (Technicon, RA-XTTM System, Global Medical Instrumentation, Minessota, Estados Unidos). Os níveis de NEFA foram determinados pelo método Johnson & Peters18 utilizando kitcolorimétrico (WAKO NEFA-C, Wako Pure Chemical Industries, Osaka, Japão).

Caracterização da remodelação cardíaca

Como a obesidade pode acarretar remodelação cardíaca, a mesma foi estudada por meio de avaliação estrutural post morteme por análise da expressão das proteínas quinase e fosfatases que regulam o grau de fosforilação do PLB decorrente da ativação beta-adrenérgica miocárdica.

a) Análise estrutural cardíaca

Os animais foram submetidos a jejum de 12 a 15 h, anestesiados com pentobarbital sódico (50 mg/kg/ip; Cristália^® Produtos Químicos Farmacêuticos Ltda., Itapira, São Paulo, Brasil) e sacrificados por decapitação. O coração dos animais foi removido e dissecado, e as seguintes determinações foram realizadas: peso total do coração, do ventrículo esquerdo, direito e átrio, e suas respectivas relações com o peso corporal e o comprimento da tíbia no momento do sacrifício. Essas análises podem indicar a presença de remodelação cardíaca em níveis atrial e ventricular.

b) Análise da expressão proteica

A expressão proteica de PLB total, pPLB(ser-16), PKA e PP-1 foi realizada pela técnica de Western Blot.

Técnica de Western Blot a) Extração das proteínas

Fragmentos do ventrículo esquerdo foram rapidamente congelados em nitrogênio líquido e armazenados em freezer a −80°C. A amostra congelada foi homogeneizada em aparelho Polytron (Ika Ultra Turrax^TM T25 Basic, Wilmington, Estados Unidos) com tampão de lise hipotônico (fosfato de potássio 50 mM pH 7,0, sucrose 0,3 M, DTT 0,5 mM, EDTA 1 mM pH 8.0, PMSF 0,3 mM, NaF 10 mM e inibidor de fosfatase). O processo foi realizado três vezes durante 10 segundos a 4ºC, com intervalos de 20 segundos. O produto da homogeneização foi centrifugado (Eppendorf 5804R, Hamburgo, Alemanha) a 12.000 rpm por 20 minutos a 4ºC, e o sobrenadante foi transferido para tubos eppendorfs e armazenados em freezer a −80ºC. A concentração de proteína foi analisada pelo método de Bradford19, utilizando as curvas de BSA Protein Standard (Bio-Rad, Hercules, CA, Estados Unidos) como padrão.

As amostras das proteínas foram diluídas em tampão Laemmli (Tris-HCL 240mM, SDS, 0,8%, glicerol 40%, azul de bromofenol 0,02% e beta-mercaptoetanol 200 mM) e separadas por eletroforese utilizando sistema Mini-Protean 3 Electrophoresis Cell (Bio-Rad, Hercules, CA, Estados Unidos). A corrida eletroforética foi realizada em gel bifásico, de empilhamento (Tris-HCL 240mM pH 6,8, poliacrilamida 30%, APS e Temed) e de resolução (Tris-HCL 240mM pH 8,8, poliacrilamida 30%, APS e Temed), na concentração de 6% a 12%, dependente do peso molecular da proteína analisada. No primeiro poço do gel foi aplicado um padrão de peso molecular, Kaleidoscope Prestained Standards (Bio Rad, Hercules, CA, Estados Unidos), para identificação do tamanho das bandas. A corrida eletroforética foi efetuada a 120 V (Power Pac HC 3.0A, Bio-Rad, Hercules, CA, Estados Unidos), por aproximadamente três horas, com tampão de corrida (Tris 0,25M, glicina 192 mM e SDS 1%). Em seguida, as proteínas foram transferidas para uma membrana de nitrocelulose em sistema Mini-Trans Blot (Bio-Rad, Hercules, CA, Estados Unidos) utilizando-se tampão de transferência (Tris 25 mM, glicina 192 mM, metanol 20% e SDS 0,1%). As membranas foram lavadas duas vezes com tampão TBS (Tris-HCl 20mM pH 7,6 e NaCl 137mM). Os sítios inespecíficos de ligação do anticorpo primário à membrana foram bloqueados mediante incubação com solução a 0,5% de leite em pó desnatado, dissolvido em tampão TBS-T pH 7,4 (Tris-HCl 20mM, NaCl 137mM e detergente Tween 20 0,1%) por 120 minutos à temperatura ambiente sob constante agitação. Em seguida, a membrana foi lavada três vezes em solução basal (Tris 1M pH2,8, NaCl 5M e Tween 20) e incubada com o anticorpo primário diluído na solução bloqueadora, sob agitação constante por 12 horas. Após a incubação com o anticorpo primário, a membrana foi lavada três vezes em solução basal e incubada com o anticorpo secundário em solução bloqueadora por duas horas sob agitação constante. Para remover o excesso de anticorpo secundário, a membrana foi lavada três vezes em solução basal. Por fim, a imunodetecção foi realizada por meio do método de quimioluminescência, de acordo com as instruções do fabricante (Enhancer Chemi-Luminescence, Amersham Biosciences, NJ, Estados Unidos). As membranas de nitrocelulose foram expostas a filmes radiográficos X-Omat AR (Eastman Kodak Co., Estados Unidos), nos tempos padronizados para cada proteína estudada.

b) Anticorpos

PLB mouse IgG (Thermo Scientific, Golden, CO, Estados Unidos, MA3-922). Concentração utilizada: 1:5.000.

Phospho-Phospholamban (Ser16), rabbit IgG (Badrilla, Leeds, West Yorkshire, Reino Unido, A010-12). Concentração utilizada: 1:5.000.

PKA rabbit IgG (Abcam Inc, MA, Estados Unidos, AB71764). Concentração utilizada: 1:500.

PP1 rabbit IgG (Abcam Inc, MA, Estados Unidos, AB16446). Concentração utilizada: 1:1.000.

ß-Actin, rabbit IgG1 (Santa Cruz Biotechnology Inc, Santa Cruz, CA, Estados Unidos, SC81178). Concentração utilizada: 1:1.000.

As análises quantitativas dos blots foram realizadas pelo programa Scion Image (Scion Corporation, Frederick, Maryland, Estados Unidos), softwarelivre, disponível no endereço: http://www.scioncorp.com/

Análise estatística

Todas as variáveis foram submetidas ao teste de normalidade Kolmogorov-Smirnov. O perfil nutricional, as comorbidades associadas à obesidade, os dados anatômicos e a expressão proteica cardíaca foram analisados pelo teste tde Student para amostras independentes. O teste de tolerância à glicose foi examinado por meio da análise de variância (ANOVA) para o modelo de medidas repetidas em grupos independentes e complementado com o teste de Bonferroni20. O programa utilizado para as análises estatísticas foi o Sigma Plot 3.5 para Windows (Systat Software Inc., San Jose, CA, Estados Unidos). Os dados foram apresentados em média ± desvio-padrão. O nível de significância considerado para todas as variáveis foi de 5%.

Resultados Composição dos grupos controle e obeso

Após aplicação do critério estabelecido para a composição dos grupos experimentais, 27 animais permaneceram no estudo, constituindo o grupo controle (C, n = 14) e o grupo obeso (Ob, n = 13).

Perfil nutricional

A Tabela 1 mostra o perfil nutricional dos animais C e Ob. O peso corporal final, o ganho de peso, os depósitos de gordura epididimal, retroperitoneal e visceral, a gordura corporal total e o índice de adiposidade foram maiores no grupo obeso em relação ao grupo controle. Os animais Ob ingeriram menor quantidade de ração que os C. Não houve diferença na ingestão calórica entre os grupos.

Tabela 1 Perfil nutricional

Variáveis	Grupos
Variáveis	C (n = 14)	Ob (n = 13)
PCI (g)	290 ± 13	308 ± 23*
PCF (g)	445 ± 39	486 ± 45*
Ganho de peso (g)	300 ± 16	342 ± 16*
Ingestão alimentar (g/dia)	26,0 ± 2,1	22,0 ± 2,4*
Ingestão calórica (kcal/dia)	76,7 ± 6,2	80,3 ± 8,7
Eficiência alimentar (%)	2,05 ± 0,30	2,33 ± 0,25*
Epididimal (g)	8,4 ± 1,7	14,2 ± 4,4*
Retroperitoneal (g)	7,3 ± 1,9	14,4 ± 4,7*
Visceral (g)	4,80 ± 1,20	8,10 ± 1,80*
Gordura corporal total (g)	20,5 ± 4,1	36,7 ± 7,1*
Índice de adiposidade (%)	4,61 ± 0,85	7,55 ± 1,36*

C: controle; Ob: obeso; PCF: peso corporal final; PCI: peso corporal inicial. Dados expressos em média desvio-padrão. Teste t de Student para amostras independentes.

p <0,05 × C.

Análise das comorbidades a) Perfil hormonal e pressão arterial sistólica

A Figura 3 ilustra o resultado dos valores séricos de insulina (A) e leptina (B); a obesidade acarretou aumento nas concentrações desses hormônios. O resultado da pressão arterial sistólica final (C) não apresentou diferença significativa entre os grupos.

Figura 3 Níveis séricos de insulina (A) e leptina (B) dos animais controles (n = 8) e obesos (n = 8). Pressão arterial sistólica (C) dos animais controles (n = 14) e obesos (n = 13). Dados expressos em média ± desvio-padrão. Teste t de Student para amostras independentes, * p < 0,05 × C. b) Teste de tolerância à glicose

A Figura 4 mostra o resultado do teste de tolerância à glicose realizado nos grupos C e Ob. Os níveis glicêmicos foram semelhantes no momento basal entre os grupos. Após a administração intraperitoneal de glicose, a glicemia foi elevada no grupo Ob nos momentos 15, 30, 60 e 90 em relação ao grupo C.

Figura 4 Teste de tolerância à glicose dos animais controles (n = 14) e obesos (n = 13). Dados expressos em média ± desvio-padrão. Análise de variância (ANOVA) para o modelo de medidas repetidas em grupos independentes e complementada com o teste de Bonferroni. * p < 0,05 × C. c) Perfil glicêmico e lipídico

A Tabela 2 mostra as análises bioquímicas séricas dos animais dos grupos C e Ob. As concentrações plasmáticas de glicose, colesterol, HDL e NEFA não foram diferentes entre os tratamentos; a concentração de triglicérides foi maior, significantemente, no Ob em relação ao C.

Tabela 2 Perfil glicêmico e lipídico

Variáveis	Grupos
Variáveis	C (n = 14)	Ob (n = 13)
Glicose (mg/dL)	125 ± 16	138 ± 14
Triglicérides (mg/dL)	43,3 ± 10,3	82,1 ± 15,7^*
Colesterol (mg/dL)	62,4 ± 11,5	67,5 ± 18,0
HDL (mg/dL)	23,5 ± 3,0	26,6 ± 5,8
NEFA (mmol/L)	0,42 ± 0,10	0,43 ± 0,10

HDL: lipoproteína de alta intensidade; NEFA: ácidos graxos não esterificados. Dados expressos em média ± desvio-padrão. Teste t de Student para amostras independentes.

p <0,05 × C.

Remodelação cardíaca a) Estrutura macroscópica cardíaca

A Tabela 3 mostra a estrutura macroscópica cardíaca post mortem dos ratos C e Ob. Após 15 semanas de obesidade, houve diferença significativa no peso dos átrios.

Tabela 3 Estrutura macroscópica cardíaca e tíbia

Variáveis	Grupos
Variáveis	C (n = 14)	Ob (n = 13)
Tíbia (cm)	4,30 ± 0,07	4,30 ± 0,10
VE (g)	0,79 ± 0,06	0,85 ± 0,09
VD (g)	0,23 ± 0,02	0,25 ± 0,03
AT (g)	0,09 ± 0,01	0,10 ± 0,01*
Coração total (g)	1,11 ± 0,09	1,20 ± 0,14
VE/tíbia (g/cm)	0,18 ± 0,01	0,19 ± 0,02
VD/tíbia (g/cm)	0,050 ± 0,005	0,060 ± 0,008
AT/tíbia (g/cm)	0,020 ± 0,002	0,020 ± 0,003
Coração/tíbia (g/cm)	0,30 ± 0,02	0,30 ± 0,02

C: controle; Ob: obeso; AT: peso do átrio; VD: peso do ventrículo direito; VE: peso do ventrículo esquerdo; AT/tíbia: relação AT pelo comprimento da tíbia; VD/tíbia: relação VD pelo comprimento da tíbia; VE/tíbia: relação VE pelo comprimento da tíbia; Dados expressos em média ± desvio padrão. Teste "t" de Student para amostras independentes.

p< 0,05 vs C

b) Análise da expressão proteica

De acordo com a Figura 5, não verificamos diferença significativa nas expressões proteicas de PLB (A), pPLB Ser-16 (B), PKA (C) e PP-1 (D) entre os grupos controle e obeso.

Figura 5 Expressões de PLB (A), pPLB-ser16 (B), PKA (C) e PP-1(D) normalizadas pela beta-actina. PKA: proteína quinase A; PLB: fosfolambam desfosforilado; pPLB-ser16: fosfolambam fosforilado na serina16; PP-1: fosfatase-1. Controle (n = 6) e obeso (n = 6). Os dados estão expressos em média ± desvio-padrão. Teste t de Student * p < 0,05 × C. Discussão

O principal achado deste estudo foi que a obesidade induzida por dieta rica em gordura insaturada não induziu alteração no balanço entre fosforilação e desfosforilação no coração; os comportamentos das proteínas quinase e fosfatase foram semelhantes nos dois grupos analisados.

A indução da obesidade por dieta se assemelha à encontrada na população humana, e vem sendo utilizada para reproduzir possíveis alterações moleculares, estruturais, metabólicas e funcionais em diferentes órgãos do corpo humano21. O alto teor calórico da dieta utilizada neste experimento, suficiente para promover a obesidade em ratos, foi devido ao elevado teor de gorduras insaturadas. Neste trabalho, os resultados mostraram que o índice de adiposidade foi significativamente maior nos obesos (controle = 4,61 ± 0,85; obeso = 7,55 ± 1,36; p <0,005) em relação aos controles. Esse resultado está de acordo com trabalhos (realizados em roedores) que classificam a obesidade utilizando esse índice22.

A obesidade vem sendo caracterizada por várias comorbidades, como intolerância à glicose, resistência à insulina, hipertensão arterial sistêmica, dislipidemias, hiperinsulinemia e hiperleptinemia11 ^, 23 ^, 24. Neste estudo, os animais obesos apresentaram as seguintes comorbidades: intolerância à glicose, hiperinsulinemia, hipertrigliceridemia e hiperleptinemia. A intolerância à glicose associada ao aumento de insulina sérica mostrou que os animais apresentaram resistência à ação da insulina. O aumento nos níveis de insulina nos obesos não foi capaz de manter a homeostasia dos carboidratos frente à suplementação desse substrato nos animais obesos. O aumento dos níveis de triglicérides nos ratos com obesidade pode ser consequência da elevada captação dos triglicérides na forma de quilomícrons e/ou diminuição da absorção dos triglicérides pelos tecidos periféricos25. A elevação da leptina foi devida aos maiores depósitos de gordura, já que há correlação entre os níveis de leptina e o tecido adiposo14 ^, 26. A leptina, por ser um hormônio derivado do tecido adiposo, participa do balanço energético, regulando o consumo alimentar e a oxidação dos lipídeos27 ^, 28. A redução da ingestão de alimentos pelos obesos sugere que o aumento da leptina foi efetivo no controle do apetite. Os dados relativos às comorbidades observados neste trabalho estão de acordo com outros trabalhos que induziram a obesidade experimentalmente14 ^, 17 ^, 29 ^, 30.

A constatação mais importante deste estudo foi que a obesidade induzida por dieta insaturada não alterou a expressão do pPLB-ser16, e as proteínas responsáveis pelo balanço entre a sua fosforilação e a desfosforilação, PKA e PP-1, respectivamente. Sendo a via beta-adrenérgica a responsável pela fosforilação no sítio da serina 16 do PLB, podemos inferir que esse sistema não foi suficientemente estimulado para acarretar alteração na fosforilação do PLB miocárdico ou outro sistema se contrapôs a essa ativação. O comportamento do pPLB-ser16 neste trabalho está em discordância com o estudo anterior realizado em nosso laboratório12, em que foi encontrada diminuição do PLB em seu estado fosforilado na serina 16 em ratos obesos tratados com a mesma dieta utilizada neste estudo. Não encontramos explicação para a diferença entre os resultados; essa divergência poderia estar relacionada com o nível do índice de adiposidade dos animais obesos, que foi 16% maior no estudo realizado por Lima-Leopoldo12. Não há trabalhos na literatura que tenham analisado a relação entre as proteínas que interferem na fosforilação e desfosforilação do PLB miocárdico em ratos obesos submetidos a dieta hiperlipídica.

Conclusão

A hipótese inicial deste estudo não foi confirmada. A obesidade não promove desequilíbrio entre a fosforilação e a desfosforilação, via beta-adrenérgica, do PLB miocárdico.

Contribuição dos autores

Concepção e desenho da pesquisa: Freire PP, Lima Leopoldo AP, Leopoldo AS, Silva DCT, Campos DHS, Cicogna AC; Obtenção de dados: Freire PP, Alves CAB, Deus AF, Campos DHS; Análise e interpretação dos dados: Freire PP, Alves CAB, Deus AF, Lima-Leopoldo AP, Leopoldo AS, Silva DCT, Tomasi LC, Campos DHS, Cicogna AC; Análise estatística: Freire PP, Alves CAB, Lima-Leopoldo AP, Leopoldo AS, Silva DCT, Tomasi LC, Campos DHS, Cicogna AC; Obtenção de financiamento: Freire PP, Lima-Leopoldo AP, Leopoldo AS, Cicogna AC; Redação do manuscrito: Freire PP, Tomasi LC, Cicogna AC; Revisão crítica do manuscrito quanto ao conteúdo intelectual importante: Freire PP, Alves CAB, Deus AF, Lima Leopoldo AP, Leopoldo AS, Silva DCT, Tomasi LC, Cicogna AC.

Fontes de financiamento

O presente estudo foi financiado pela FAPESP.

Vinculação acadêmica

Este artigo é parte de Conclusão de curso de Paula Paccielli Freire pela Universidade Estadual Paulista (UNESP) - Faculdade de Medicina de Botucatu (FMB).